镍柱纯化总有一条杂蛋白怎么办?

来源:百度知道 编辑:UC知道 时间:2024/06/07 02:26:53
位置在我要的目的蛋白下方离得很近,我换了咪唑的量洗脱还是不行~~
我用了两个梯度,一个50mM,一个250mM,也用过300mM洗

可以使用咪唑梯度洗脱,不知道你用的是什么仪器,有杂蛋白说明咪唑浓度还是太高啊

你的纯化方法有点问题。
Ni柱纯化蛋白一般都要用梯度洗脱。
一般用20mM、50mM、100mM、250mM,差不多用250mM洗下来的才是你的蛋白,
40mM肯定有一些杂蛋白的啊,建议40mM洗完了,继续用250mM洗脱。

我感觉可以从如下的方面入手分析:
1.结合及冲洗缓冲中加入10mmol左右的imidazole,这样可以和弱亲和(比如说His数目较少)的杂蛋白有一个竞争关系,减少杂蛋白吸附。
2.适当减少凝胶体积,所用凝胶的理论载量不要大于目的蛋白太多。
3.加入盐、乙醇、甘油等减弱目的蛋白与杂蛋白之间的非特异性吸附。加入还原剂避免目的蛋白与杂蛋白间形成二硫键。
4.纯化过程中加入蛋白酶抑制剂,防止目的蛋白降解,产生带有His-tag的杂蛋白。

前几天我也镍柱纯蛋白了,我的蛋白分子量是52KD大小的,先用20mmol咪唑洗柱,接着再用30mmol洗,洗脱蛋白时的浓度是150mmol,结果还不错,你可以试试