人类外周血淋巴细胞培养为什么选择培养在72H时收集细胞

来源:百度知道 编辑:UC知道 时间:2024/05/27 02:18:35
实验步骤

(一)培养液配制(在超静工作台内无菌操作);

每个培养瓶(容积30ml)中加入5ml培养液,其中含:

RPMI1640 4ml

灭活小牛血清 1ml

PHA 2.5mg

青霉素 500U

链霉素 500ug

依次将上述试剂加入培养瓶中,反复吹打使其混合均匀,用5%NaHCO3调节培养基的pH值至7.2-7.4。

(二)血样本的采集:先以碘酒和75%乙醇消毒皮肤。用2ml灭菌注射器吸取约0.2ml肝素,作静脉穿刺,抽取外周静脉血1ml。转动针筒以混匀肝素

(三)接种:常规消毒后,立即将针头插入灭菌小瓶内,送入超净工作台 ,在火焰旁将血液滴入2~3个盛有5ml培养液的培养瓶内,每瓶0.2~0.3ml(6号针头45度倾斜,约20滴),盖上橡皮塞,轻轻摇动以混匀。贴好标签,将培养瓶放在37℃恒温箱内静置培养 72h 。

72小时是细胞分裂最旺盛的时间,这时候终止分裂,得到 的分裂相是最多的。

通常情况下哺乳动物外周血中是没有分裂细胞的,只有在异常情况下才能发现。外周血中的小淋巴细胞几乎都处于G1期或G0期的非增殖状态。体外培养时经一定剂量的植物血凝素(PHA)刺激,T淋巴细胞可转变为淋巴母细胞,重新进入增殖周期,进行有丝分裂。外周血中的淋巴细胞经过68-72小时(三个周期)的短期培养,即可产生大量的增殖期细胞群。用秋水仙素(细胞分裂阻断剂)积累分裂相,可使处在分裂期的淋巴细胞停留在分裂中期或早中期,从而获得足够的可供分析的中期分裂相。