PCR反应中Taq酶最适温度为75度，为什么把仪器设为72度？

其实虽然tap酶的最适温度在75度，但处于这个温度下酶失活的速度也较72度要快，而72度时，酶的活力与75度相比虽有下降，但对最终结果影响不大

而且温度高，不利于引物和模板的结合，也不利于合成出的dna链与模板结合。

个人理解，仅供参考。

大概是酶的种类不一样吧。寡核苷酸引物的延伸应该在最适温度下进行,对于Taq酶来说最适温度一般为72-78度。但过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。我们用的也是72度，酶是黄石公园Mushroom Spring的嗜热水生菌（T.aguaticus）的taq。
程序是94度4.5分预变性，94度30秒denature，55度1分aneal，72度1分extension（循环）72度5分结束。

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随着分子生物学研究发展的不断广泛和深入，PCR已成为一门相当成熟的常规技术，而热聚合酶（即Taq酶）的合理选择是PCR成败与否的一个关键因素。目前市面上有多种Taq酶，能够满足多方面的实验需要。那么，如何选择最合适的Taq酶？根据用户经常考虑的指标，如特异性、保真性、耐热性、扩增速率、扩增片段长度、能否进行复杂模板扩增以及优化条件难易等等，我们在这儿将主要的Taq酶归归类，其性质、用途也就一目了然了。

高特异性Taq酶
高度特异性地扩增所需的片段是PCR最基本的要求，影响PCR特异性的因素很多，包括模板、引物性质及质量、反应条件的控制等等，而高特异性Taq酶的出现大大减少了摸条件这一繁琐的实验过程，也为PCR产物快速有效的纯化（PCR产物直接纯化）打下了基础。这类酶最典型的代表是热启动Taq酶。大家都知道，在PCR第一个循环变性之前，有一个升温的过程，引物和模板会有一些非特异性配对，如果这时Taq酶发挥活性，就很容易产生非特异性扩增，由于循环初期模板量非常少，产生的非特异性条带经过后面的指数扩增，就会严重干扰目的片段的扩增，甚至导致特异性条带不能扩出。而热启动Taq酶是必需经过高温才能激活的酶，因此在初始循环的变性之前它没有活性，不会产生非特异性扩增，这就大大提高了PCR扩增的特异性。第一代热启动Taq酶往往