如何使用Folin-酚法测定蛋白酶的活力？

实验原理：
采用Folin-酚法测定，Folin-酚试剂由甲试剂和乙试剂组成。甲试剂由碳酸钠，氢氧化钠，硫酸铜及酒石酸钾钠（KNaC4H4O6•4H2O）组成。多肽中的肽键在碱性条件下，与酒石酸钾钠铜盐溶液起作用，生成紫红色络合物。乙试剂是由磷钼酸、磷钨酸、硫酸和溴等组成。此试剂在碱性条件下，易被多肽中酪氨酸的酚基还原呈蓝色反应，其色泽深浅与多肽含量成正比[28]。
实验所需试剂的配置：
(1) 试剂甲：(A) ：10g Na2CO3,2g NaOH和0.25g酒石酸钾钠（KNaC4H4O6•4H2O），溶解于500mL去离子水。(B) ：0.5g 硫酸铜（CuSO4•5H2O）溶解于100mL 去离子水中；将50份（A）与1份（B）混合，即为试剂甲。
(2) 试剂乙：将Folin-酚试剂与去离子水按1:1混合。
(3) 标准蛋白质溶液：精确称取结晶牛血清蛋白，溶于去离子水中，浓度为250μg/mL左右。牛血清蛋白溶于水，若混浊，可改用0.9%（质量分数）NaCl溶液。
(4) 样品溶液：通常根据样品中蛋白含量的不同，样品在测定前需要进行适当倍数的稀释。
实验步骤：
(1) 标准曲线的测定: 取16支大试管，1支作空白，3只留作未知样品，其余试管分成两组，分别加入0，0.1，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0 mL标准蛋白质溶液（浓度为250μg/mL）。用水补足到1.0 mL，然后每支试管加入5mL试剂甲，在漩涡混合器上迅速混合，于室温（20-25℃）放置10 min。再向各个试管加入0.5mL试剂乙，同样立即混合。然后在室温下放置30 min，以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照，于700nm处测定各试管中溶液的吸光度值，以蛋白质的量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制出标准曲线。
(2) 样品的测定：取1mL 样品溶液（其中蛋白质含量约20-25μg），按上述方法进行操作，取1mL水代替样品作为空白对照。

自己搜索一下“Folin-酚法”，就有具体的步骤了。
Folin-酚法是测定蛋白含量的。
你只要把用蛋白酶消化一定量的蛋白，然后用Folin-酚法测定剩下的蛋白含量，两者相减就是蛋白酶消化掉